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          禽流g病毒H7N9亞型三重熒光PCR檢測試劑盒簡介
          點擊次數(shù):1374 更新時間:2022-05-18

          禽流g病毒H7N9亞型三重熒光PCR檢測試劑盒

           

                                                   

           本試劑盒采用TaqMan探針法實時熒光PCR技術,是針對甲型流感病毒、禽流g病毒H7和禽流gN9的檢測體系,用于血液、糞便、鼻拭子和咽拭子等樣本的檢測。

          【產品名稱】

          通用名稱:甲型流感/禽流gH7N9亞型三重熒光PCR檢測試劑盒

          【試劑盒組成】

          組成成份(48Tests/kit

          規(guī)格

          核酸擴增試劑

           

          三重RT-PCR反應液

          1000µl×1

          Taq

          31µl×1

          PCR Enhancer

          20.5µl×1

          對照品

           

          陰性對照

          25µl×1

          陽性對照

          25µl×1

          注:不同批號的試劑組份不可混用。

          【儲存條件及有效期】

          本試劑盒貯存于-20℃的條件下有效期為6個月。

           【生產日期及批號】

          詳見包裝袋和外包裝盒。

          【適用儀器(熒光PCR檢測儀)

          Ø   ABI公司Prism700073007500系列

          Ø   RotorGene系列

          Ø   Bio-Rad公司的iCycler系列

          Ø   Roche LightCycler系列

          【自備試劑】

          核酸提取試劑。

          【樣本采集、存放及運輸】

          1.樣本采集:各類型樣本按照常規(guī)方法采集。

          2.存放:樣本在2—8℃條件下保存應不超過72h-70℃以下可長期保存,但應避免反復凍融(最多凍融3次)。

          3.運輸:采用冰h或泡沫箱加冰密封進行運輸。

          【檢驗方法】

          1.樣本處理:

          用戶可采用病毒RNA提取試劑盒提取RNA用于檢測。說明:陽性對照及陰性對照無需提取,直接上樣。

          2.擴增試劑準備(PCR前準備區(qū)):

          從試劑盒中取出三重RT-PCR 反應液、Taq酶及PCR Enhancer,室溫融化并振蕩混勻后,2000rpm離心10秒。設所需要的PCR反應管管數(shù)為nn = 樣本數(shù) + 1管陰性對照 + 1管陽性對照),每個測試反應體系配制如下表:

          試劑

          RT-PCR反應液

          Taq

          PCR enchancer

          用量

          19.0 µl

          0.6ul

          0.4 µl

          計算好各試劑的使用量,加入一適當體積離心管中,充分混合均勻,2000rpm離心10秒,向設定的nPCR反應管中分別加入20 µl,轉移至樣本處理區(qū)。

          3.加樣(樣本處理區(qū)):

          向所設定的nPCR 反應管中分別加入待檢樣本RNA、陰性對照和陽性對照各5µl,蓋緊管蓋,轉移至檢測區(qū)。將PCR反應管排好放入PCR儀內,記錄樣本擺放順序。

          4.PCR擴增(檢測區(qū))

          4.1       循環(huán)條件設置

          50℃:10 min

          95℃:3 min

          95℃:10 sec, 60: 1 minc, 40個循環(huán)。

          熒光信號收集設在60℃。反應體系設為25ul

          4.2       儀器檢測通道選擇

          甲型流感待測熒光為FAM熒光素,H7型待測熒光為VIC熒光素,N9型待測熒光為ROX熒光素。

          5. 結果分析條件設定:

          5.1       閾值(threshold)設定原則以閾值線剛好超過正常陰性對照曲線(無規(guī)則的噪音線)的最高點為準。

          5.2       基線(baseline)應選擇該次實驗指數(shù)擴增前所有樣本熒光信號比較穩(wěn)定的一段區(qū)域(所有樣本熒光信號無較大波動),起始點(循環(huán)數(shù))應避開熒光采集起始階段的信號波動,終止點(循環(huán)數(shù))應比最早出現(xiàn)指數(shù)擴增的樣本Ct值減少1-2個循環(huán)。

          注:具體設置方法請參照各儀器使用說明書。

          6. 質控標準:

          陰性對照的檢測結果應為陰性;

          陽性對照的Ct值應小于等于32.0

          否則,此次實驗視為無效。7. 結果判斷:

          Ø Ct值無讀數(shù)的樣本為陰性。

          Ø Ct≤38.0的樣本為陽性。

          Ø Ct值大于38.0的樣本建議重做。重做結果Ct值<40.0為陽性,否則為陰性。

          擴增結果

          結果說明 

          FAM(-),VIC(-),ROX(-)

          未檢出禽流gH7N9核酸,未檢出甲型流感病毒

          FAM(+),VIC+),ROX(+)

          檢出禽流gH7N9核酸

          FAM(+),VIC(-),ROX(-)

          檢出甲型流感病毒,非H7N9亞型

          FAM(+),VIC(+),ROX(-)

          檢出禽流gH7亞型

          FAM(+),VIC(-),ROX(+)

          檢出禽流gN9亞型

          【試劑盒使用注意事項】

          1. 有關實驗室管理規(guī)范請嚴格按照行業(yè)行政主管部門頒布的有關基因擴增檢驗實驗室的管理規(guī)范執(zhí)行。

          2. 本試劑盒僅用于體外檢測。

          3. 實驗請嚴格分區(qū)操作:

          第一區(qū):PCR前準備區(qū)——準備擴增所需試劑;

          第二區(qū):樣本處理區(qū)——待測樣本和對照品處理;

          第三區(qū):檢測區(qū)——PCR擴增檢測。

          4. 各區(qū)物品均為專用,不得交叉使用,避免污染,實驗后即請清潔工作臺。

          5. 試劑盒內各試劑使用前,充分融化后請稍事離心。

          6. 在-20℃保存的樣本裂解產物,應在加樣前置室溫解凍,作短暫離心后使用。

          7. 分裝有反應液的反應管應扣蓋或裝入密實袋內再轉移至樣本區(qū)。

          8. 加樣時應使樣品*落入反應液中,不應有樣品粘附于管壁上,加樣后應盡快蓋緊管蓋。

          9. 擴增完畢立即取出反應管,密封在專用塑料袋內,丟棄于指d地點。

          10. 反應液分裝時應盡量避免產生氣泡,上機前注意檢查各反應管是否蓋緊,以免熒光物質泄露污染儀器。

          11. 實驗中用過的吸頭請直接打入盛有1%次氯酸鈉的廢物缸內,并與其他廢棄物品一同滅菌后丟棄。

           

          12. 工作臺及各物品定期用1%次氯酸鈉、75%酒精或紫外燈進行消毒。

           

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