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此說明僅限參考

葡聚糖凝膠 G 系列使用說明

1 化學和物理性質

葡聚糖凝膠是一種珠狀的凝膠，含有大量的羥基，很容易在水中和電解質溶液中溶脹。親水基質使其非特異性吸附小化，并在生物分子分離期間得到較高的回收率。G 型的葡聚糖凝膠有各種不同的交聯度，因此它們的溶脹度和分級分離范圍也有所不同。葡聚糖凝膠的溶脹度基本上不因鹽和洗滌劑的存在而受影響。

葡聚糖凝膠有不同的粒度。超細級的葡聚糖凝膠是用于需要*分辨率的柱色譜和薄層色譜。粗級和中級的凝膠用于制備性色譜過程，可在較低的壓力下獲得較高的流速。另外， 粗級也可用于批量工藝。

2 產品說明

3 使用方法

葡聚糖凝膠 G 系列產品以干粉形式存在，使用前必須溶脹，在膨脹期間應避免過度攪拌，因為它可能破壞填料，不要使用磁力攪拌器。

3.1 填料的準備

（1） 將填料在過量去離子水或緩沖液中，室溫條件下膨脹 3 小時，或用熱水膨脹 1 小時。洗脫緩沖液不應含有高粘度的試劑。溶脹過程中，如果上層有碎膠，請去除。

（2） 將溶脹好的填料，所有的緩沖液等材料平衡至實驗操作溫度。

3.2 裝柱

    檢查層析柱所有部件，特別是過濾網，密封圈，螺旋塞是否緊密，玻璃管是否干凈和完整。

• 將柱內及柱子底端用水或緩沖液潤濕并保持一小段液位（液面略高于濾膜），務 必使底端無氣泡。
• 用玻璃棒引導勻漿沿著柱內壁一次性倒入柱內，注意勿使產生氣泡。打開柱子出液口，使凝膠在柱內自由沉降，連結好柱子頂端柱頭。
• 打開蠕動泵，讓緩沖液用使用時流速的 1.33 倍的流速流過，使柱床穩定（注意壓力不要超過填料大耐壓）。

3.3 平衡

上樣前平衡層析柱至少 5-10 個柱體積直到記錄儀基線變得平穩為止（流出液的 PH 值和等電點等于上柱的Buffer 的PH 值和等電點）。

3.4 上樣

樣品一定要離心或過濾后（0.45um）上樣。

凝膠過濾的上樣量一般為不大于 5%的柱床體積，我們建議初次上樣控制在1-2%的柱床體積，視分離情況可以調整；脫鹽時上樣量可以達到 20%的柱床體積，柱高的選擇也與分離要求相關，柱高過高的凝膠層會引起較大的反壓，應當盡可能避免。難分離物質要有一定柱高和流速控制，脫鹽時高徑比為 5：1 即可。

3.5 洗脫方法

可以用無鹽水，也可以采用上柱時的緩沖液洗脫；在上柱 Buffer 中加入 NaCl 等梯度洗脫或鹽梯度洗脫也可以*分離純化。

3.8 在位清洗（CIP）

凝膠使用十次后作一次 CIP，目的是去除柱床內沉淀的及頑固殘留的蛋白。方法是以

40cm/h 用 0.1 M 氫氧化鈉洗四個柱體積，再以至少三個柱體積平衡緩沖液再生。

注意事項：

1. 上樣之前，樣品必須經過膜過濾及去除色素，否則雜質及色素會被吸附到填料上，影響填料的正常使用。

2. 在使用過程中，避免使用高濃度的強酸強堿，酸和堿的濃度應低于 0.15 摩爾。堿會使流速變慢。

3. 不同的樣品，吸附和洗脫方法不相同，可以根據相關的文獻進行。